食品生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)

內(nèi)容概要

《食品生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)》由于國萍主編，共分8章43個實(shí)驗(yàn)，內(nèi)容設(shè)置與即將配套出版的理論教材相一致，包括糖類、脂類、蛋白質(zhì)類、核酸類、酶類、維生素與色素、物質(zhì)代謝和生物氧化，還包括綜合實(shí)驗(yàn)；附錄中提供了生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)室安全與防護(hù)知識、常用試劑和溶液的配制以及常用數(shù)據(jù)列表等內(nèi)容。本書內(nèi)容全面，并配有一些綜合性和較大型的實(shí)驗(yàn)，供不同學(xué)校、不同專業(yè)根據(jù)具體情況選定。本書力求結(jié)構(gòu)清晰簡潔、表達(dá)嚴(yán)謹(jǐn)規(guī)范。
《食品生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)》可作為高等院校食品科學(xué)或生物相關(guān)類各專業(yè)的實(shí)驗(yàn)教材，也可供相關(guān)專業(yè)的學(xué)生、教師和科技工作者參考，尤其適合作為本科教學(xué)的同步教材。

書籍目錄

前言
第一章  糖類
  實(shí)驗(yàn)一 糖的顏色反應(yīng)和還原性的鑒定
  實(shí)驗(yàn)二 總糖和還原糖的測定—3，5一二硝基水楊酸比色法
  實(shí)驗(yàn)三 蔗糖含量的測定
  實(shí)驗(yàn)四 總糖含量的測定——蒽酮比色法
第二章  脂類
  實(shí)驗(yàn)五 油脂酸價的測定
  實(shí)驗(yàn)六 油脂過氧化值的測定
  實(shí)驗(yàn)七 卵磷脂的提取和鑒定
  實(shí)驗(yàn)八 血清膽固醇的測定
第三章  蛋白質(zhì)
  實(shí)驗(yàn)九 氨基酸的分離鑒定——薄層層析法
  實(shí)驗(yàn)十 蛋白質(zhì)及氨基酸的呈色反應(yīng)
  實(shí)驗(yàn)十一 蛋白質(zhì)的兩性反應(yīng)和等電點(diǎn)的測定
  實(shí)驗(yàn)十二 酪蛋白的制備
  實(shí)驗(yàn)十三 蛋白質(zhì)的沉淀反應(yīng)
  實(shí)驗(yàn)十四 蛋白質(zhì)的含量測定——雙縮脲法
  實(shí)驗(yàn)十五 蛋白質(zhì)含量測定——考馬斯亮藍(lán)G一250法
  實(shí)驗(yàn)十六 聚丙烯酰胺凝膠圓盤電泳法分離蛋白質(zhì)
  實(shí)驗(yàn)十七 SDS一聚丙烯酰胺凝膠電泳法測定蛋白質(zhì)的相對分子質(zhì)量
  實(shí)驗(yàn)十八 凝膠過濾法測定蛋白質(zhì)相對分子質(zhì)量
  實(shí)驗(yàn)十九 血清蛋白的醋酸纖維薄膜電泳
  實(shí)驗(yàn)二十 IgG葡聚糖凝膠過濾脫鹽實(shí)驗(yàn)
第四章  核酸
  實(shí)驗(yàn)二十一 核酸的定量測定——定磷法
  實(shí)驗(yàn)二十二 離子交換柱層析分離核苷酸
  實(shí)驗(yàn)二十三 酵母RNA的提取——濃鹽法
  實(shí)驗(yàn)二十四 植物組織DNA的快速提取
  實(shí)驗(yàn)二十五 DNA瓊脂糖凝膠電泳
  實(shí)驗(yàn)二十六 動物組織中核酸的提取與鑒定
第五章  酶
  實(shí)驗(yàn)二十七 淀粉酶活力的測定
  實(shí)驗(yàn)二十八 唾液淀粉酶活性觀察
  實(shí)驗(yàn)二十九 胰蛋白酶的測定
  實(shí)驗(yàn)三十底 物濃度對酶促反應(yīng)速度的影響——Km值測定
  實(shí)驗(yàn)三十一 枯草桿菌蛋白酶活力測定
  實(shí)驗(yàn)三十二 堿性磷酸酶分離提取及比活性測定
  實(shí)驗(yàn)三十三 過氧化物酶和多酚氧化酶活性的測定
第六章  維生素與激素
  實(shí)驗(yàn)三十四 胡蘿卜素的測定——色譜分離法
  實(shí)驗(yàn)三十五 核黃素?zé)晒夤舛榷繙y定法
  實(shí)驗(yàn)三十六 還原性維生素C的定量測定
  實(shí)驗(yàn)三十七 單寧含量的測定
  實(shí)驗(yàn)三十八 葉綠素含量的測定——分光光度法
第七章  物質(zhì)代謝與生物氧化
  實(shí)驗(yàn)三十九 脂肪酸的B-氧化
  實(shí)驗(yàn)四十 生物組織中丙酮酸含量的測定
  實(shí)驗(yàn)四十一 味精中谷氨酸鈉的測定
第八章  綜合實(shí)驗(yàn)
  實(shí)驗(yàn)四十二 酵母蔗糖酶的提取及其性質(zhì)研究
    Ⅰ  蔗糖酶的提取及部分純化
    Ⅱ 離子交換層析純化蔗糖酶
    Ⅲ 蔗糖酶各級分活性及蛋白質(zhì)含量的測定
    Ⅳ 米氏常數(shù)(Km)及最大反應(yīng)速度(Vmax)的測定
  實(shí)驗(yàn)四十三 植物中原花色素的提取、純化與測定
    Ⅰ 植物中原花色素的提取與純化
    Ⅱ 植物中原花色素的測定(1)  
    Ⅲ 植物中原花色素的測定(2)  
參考文獻(xiàn)
附錄

章節(jié)摘錄

版權(quán)頁：   插圖：    3.電泳 在電泳槽內(nèi)的液面等高，將膜條平懸于電泳槽支架的濾紙橋上。先剪裁尺寸合適的濾紙條，取雙層濾紙條附著在電泳槽的支架上，使它的一端與支架的前沿對齊，而另一端浸入電極槽的緩沖液內(nèi)。用緩沖液將濾紙全部潤濕并驅(qū)除氣泡，使濾紙緊貼在支架上，即為濾紙橋（它是聯(lián)系醋酸纖維薄膜和兩極緩沖液之間的“橋梁”）。膜條上點(diǎn)樣的一端靠近負(fù)極，蓋嚴(yán)電泳室。通電，調(diào)節(jié)電壓到160V，電流強(qiáng)度0.4～0.7mA／cm膜寬，電泳時間約為25min。圖3—5為電泳裝置示意圖。 4.染色 電泳完畢后將膜條取下并放在染色液中浸泡10min。 5.漂洗 將膜條從染色液中取出后移置到漂洗液中漂洗數(shù)次至無蛋白區(qū)底色脫凈為止，可得色帶清晰的電泳圖譜（圖3—6）。 從左到右，依次為：血清清蛋白、a1球蛋白、a2球蛋白、β球蛋白和γ球蛋白。定量測定時可將膜用濾紙壓平吸干，按區(qū)帶分段剪開，分別浸在體積0.4mol／L氫氧化鈉溶液中，并剪取相同大小的無色帶膜條做空白對照，進(jìn)行比色?；蛘邔⒏稍锏碾娪緢D譜膜條放入透明液中浸泡2～3min后取出貼于潔凈的玻璃板上。

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